Hvordan celler sorterer god RNA fra dårlig RNA
Forskere ved MBG har sammen med kolleger i Wien opdaget en grundlæggende mekanisme, der hjælper celler med at afgøre, hvilke RNA-molekyler der bevares og anvendes – og hvilke der nedbrydes. Studiet, som blev offentliggjort i denne uge i tidsskriftet Nature, viser, at RNA-eksport og RNA-nedbrydning ikke er separate processer, som man tidligere har antaget, men derimod to konkurrerende mekanismer, der aflæser det samme molekylære signal.
DNA fungerer som lageret for genetisk information i vores celler. DNA transskriberes konstant til mRNA, opskriften for livets byggesten: proteiner, men processen kompliceres af, at funktionelle mRNA’er dannes side om side med et stort antal ikke-funktionelle RNA-molekyler. Mens funktionelle mRNA’er eksporteres fra cellekernen til cytoplasmaet for at blive oversat til proteiner, tilbageholdes ikke-funktionelle RNA’er i cellekernen og nedbrydes.
Hvordan cellerne kan skelne mellem funktionelle og ikke-funktionelle RNA’er, har længe været et centralt spørgsmål inden for molekylærbiologien.
I mange år har den dominerende opfattelse været, at funktionelle mRNA’er opnår en række modningsmarkører undervejs i processen. Deres ikke-funktionelle modparter antages ikke at erhverve disse egenskaber og derfor blive mål for nedbrydning i cellekernen. Denne model kunne dog ikke forklare, hvorfor mange proteiner, der er forbundet med RNA-eksport, også findes på RNA’er, der hurtigt bliver nedbrudt.
Nu har et internationalt forskerhold fra Aarhus Universitet og to institutter ved Vienna BioCenter i Østrig opdaget, at de processer, der styrer funktionelle og ikke-funktionelle RNA’er, er langt tættere forbundet end hidtil antaget. Arbejdet viser, at begge typer RNA kan erhverve lignende modningsmarkører og danne tilsyneladende funktionelle RNA-proteinkomplekser, før de i sidste ende enten sendes til nedbrydning eller eksport. På baggrund af deres resultater foreslår forskerne en ny molekylær mekanisme, der kan forklare, hvordan celler træffer denne grundlæggende beslutning (link).
Et molekylært kapløb mod udgangen
Den nye model tager udgangspunkt i et fælles kemisk signal: et RNA-bindende protein kaldet UAP56. To forskellige cellulære komplekser konkurrerer om at interagere med dette protein. Inde i cellekernen aflæser PAXT-komplekset UAP56 som et signal om, at RNA skal nedbrydes. Ved kerneporerne, hvor mRNA forlader cellekernen, opfatter TREX-2-komplekset derimod det samme signal som et tegn på, at RNA skal eksporteres.
Fordi begge komplekser genkender den samme molekylære markør, afhænger RNA’ets skæbne af sted og timing – en såkaldt ”kinetisk bias” eller et molekylært kapløb. Korte, ikke-funktionelle RNA’er er særligt sårbare over for PAXT-medieret nedbrydning i cellekernens indre. Længere mRNA’er har derimod større sandsynlighed for at overleve længe nok til at nå kerneporerne, hvor TREX-2 fremmer deres eksport til cytoplasmaet.
Et perfekt match
Dette gennembrud udsprang af et internationalt samarbejde. Postdocs Ulrich Hohmann og Max Graf fra hhv Clemens Plaschka og Julius Brenneckes forskningsgrupper i Wien undersøgte, hvordan mRNA’er forberedes til eksport, og de havde tidligere identificeret UAP56 som et centralt molekyle i processen.
Samtidig arbejdede postdoc Andrii Bugai og ph.d.-studerende Ana Lorenzo fra Torben Heick Jensens forskningsgruppe ved MBG, Aarhus Universitet, med at undersøge, hvordan PAXT-systemet genkender RNA’er, der er bestemt til nedbrydning i levende celler.
Ved at kombinere deres ekspertise opdagede forskerne, at et nyligt identificeret PAXT-associeret protein, LENG8, udfører præcis den samme biokemiske funktion som TREX-2: det fjerner UAP56 fra RNA. Den afgørende forskel er, hvor i cellekernen dette sker. Når TREX-2 virker ved kerneporen, fører det til funktionel RNA-eksport. Når LENG8 fungerer som en del af PAXT i cellekernens indre, bliver RNA-molekylet i stedet nedbrudt.
Perspektiver for en ny model for RNA-skæbne
Resultaterne giver et nyt grundlag for at forstå, hvordan celler skelner mellem funktionelle og ikke-funktionelle RNA’er og opretholder præcision i genernes aktivitetsniveau.
Arbejdet åbner også nye forskningsmuligheder. En interessant mulighed er, at PAXT-medieret tilbageholdelse af visse mRNA’er i cellekernen kan bidrage til hurtige cellulære responser. I stedet for straks at eksportere alle færdige mRNA’er kan celler opretholde et lager af transkripter, som hurtigt kan frigives og omsættes til proteiner, når forholdene ændrer sig.
Resultaterne stiller desuden nye spørgsmål til, hvordan funktionelle mRNA’er undgår nedbrydning via PAXT. Da kortere RNA’er ser ud til at være mere sårbare over for nedbrydning i cellekernen, kan nogle mRNA’er – særligt de korte – have udviklet ekstra beskyttelsesmekanismer, der gør dem i stand til at undslippe overvågningen, samtidig med at cellerne effektivt kan fjerne uønskede transkripter.
Besvarelsen af disse spørgsmål vil være et vigtigt fokusområde for fremtidig forskning. Mere overordnet peger studiet på, at RNA-eksport og RNA-nedbrydning ikke er adskilte processer, men konkurrerende udfald af en fælles molekylær beslutning. En bedre forståelse af, hvordan celler balancerer disse modsatrettede skæbner, kan afsløre hidtil ukendte lag af genregulering i cellekernen.
Supplerende oplysninger | |
| Vi bestræber os på, at alle vores artikler lever op til Danske Universiteters principper for god forskningskommunikation. På den baggrund er artiklen suppleret med følgende oplysninger: | |
| Finansiering: Arbejdet er støttet af Danmarks Grundforskningsfond, Lundbeck-fonden (R1982015-172), Novo Nordisk Fonden (NNF18OC0033380 og ExoAdapt grant 31199) og Carlsberg-fondet (CF24-0791). Andrii Bugai var støttet en Marie Sklodowska-Curie-bevilling (EXOonRNA, 101026781) og en Experiment Grant-bevilling fra Lundbeck-fonden (R346-2020-1610). | |
Samarbejdspartnere : Julius Brennecke, Institute of Molecular Biotechnology (IMBA), Vienna, Austria Clemens Plascka, Institute of Molecular Pathology (IMP), Vienna, Austria | |
| Læs mere: Molecular basis of polyadenylated RNA fate determination in the nucleus | |
| Kontakt : Professor Torben Heick Jensen, Institut for Molekylærbiologi og Genetik, thj@mbg.au.dk | |